Коммерческое название: Вельветовый (пурпурный) коралл 

Семейство: Acroporidae 

Род: Montipora (лат.- mons- гора, pora - пора; описывает форму и пористую структуру коралла). 

Вид: Montipora digitata, иногда аквариумисты путают этот вид с M. samarensis. 

Ареал и среда обитания: Индо-Тихоокеанский регион и Красное море, мелководье. 

Форма: Колонии разветвленные (пальчатые) или древовидные, ветви могут соединяться между собой. 

Известные симбионты: Zooxanthellae (представители Symbiodinium), включающие любую из перечисленных клад: Клада* C1 («универсальная» клада, способная приспосабливаться к различным глубинам и интенсивности освещения), или C15 (термально устойчивая клада), или C73 (типичная для мелководья – пример клады, совместимой с рассматриваемым видом Montipora). 

*«Клада» - это группа организмов, имеющих общего предка [в данном случае это различные "сорта" или "виды" зооксантелл]. 

Эффективность фотосинтеза зооксантелл зависит от многих факторов; освещение – это только один из этих факторов. Обеспечение необходимой интенсивности освещения и игнорирование других параметров (например, течения и химических показателей качества воды) может стать причиной низкой эффективности фотосинтеза. Подробнее об остальных факторах – ниже. А сейчас предлагаю рассмотреть типы зооксантелл, населяющих M. digitata. 

Чтобы понять требования представителей M. digitata к освещению, необходимо изучить типы (клады) симбиотических динофлагеллят, встречающихся в тканях этих кораллов. Известно, что 3 клады встречаются в M. digitata, одна из которых – «универсальная», одинаково хорошо себя чувствующая при различной освещенности. C15 неплохо переносит высокие температуры. О кладе C73 известно немного, разве что она встречается только у представителей Montipora digitata, обитающих на мелководье (LaJeunesse, 2005). 

Считается, что у Montipora digitata встречается единовременно лишь одна клада зооксантелл; по крайней мере, у меня нет другой информации. Однако, современные технологии, используемые для генетического определения типа зооксантелл, не позволяют определять клады, содержание которых менее 5%. Если M. digitata содержит две или более клады, тогда имеет место «перегруппировка» (когда одна клада становится доминантной, при этом температура и другие факторы играют не последнюю роль) в соответствии с условиями окружающей среды (вероятнее всего, в зависимости от освещения, интенсивность которого связана с глубиной или сезонными изменениями), что объясняет доминирование одной клады. Считается, что вертикальная зональность (когда при увеличении глубины интенсивность освещения уменьшается) объясняется типом зооксантел, населяющих коралл (Iglesias-Prieto et al., 2004). 

Нижеприведенный список основан на предположении, что каждая клада зооксантелл имеет генетически закрепленный предел фотоадаптации и является доминантным симбионтом; соответственно, приведенные группы кораллов, скорее всего, будут себя хорошо чувствовать при определенной интенсивности света в том случае, если прочие условия являются подходящими. 

C1: Клада C1 считается универсальной, поскольку она встречается в большом количестве родов кораллов как в тихоокеанском, так и в атлантическом регионе, кроме того, эта клада встречается на различных глубинах. Поэтому кораллы, содержащие эту кладу, считаются легко приспосабливаемыми к различной интенсивности освещения. Они способны адаптироваться к высокой интенсивности света, но скорее всего, предпочитают среду с низкой интенсивностью освещения. Клада C1 (также как C3, C21, C3d, C1c и C45) считается прародителем других существующих клад зооксантелл (LaJeunesse, 2004). Согласно теории, утверждающей, что зооксантеллы C1 обладают одинаковыми фото-адаптивными способностями, эти фотосинтетические животные будут хорошо себя чувствовать при одинаковой интенсивности света: Acropora cervicornis (Baker et al., 1997), Acropora divaricata, A. humilis, A. hyacinthus, A. longicyathus (из региона Большого Барьерного рифа, van Oppen et al., 2001), Acropora palifera (из Тайваня, Chen et al., 2005), Acropora sarmentosa , A. tenuis (ББР; Van Oppen et al., 2001), Astreopora (GBR, LaJeunesse et al., 2003), Astreopora myriophthalma (Taiwan; Chen et al., 2005), Карибские актинии родов Bartholomea и Condylactis (LaJeunesse et al., 2003), коралломорфы Большого Барьерного рифа и Coscinaraea, Coscinaraea wellsi и Cycloseris vaughani с Гавайских островов (LaJeunesse et al., 2004), Cyphastrea (LaJeunesse et. al., 2003), Cyphastrea chalcidicum (van Oppen, 2005), атлантические и тихоокеанские виды Discosoma (LaJeunesse, 2005), Echinophyllia orpheensis, Echinophyllia lamellosa (Chen, 2005), Карибские Eunicea (LaJeunesse et. al., 2003), Euphyllia ancora, Euphyllia glabrescens (Chen, 2005), Favia (LaJeunesse et. al., 2003), Favia favus и Favites abdita из Тайваня (Chen, 2005), Fungia (LaJeunesse et. al., 2003), Fungia crassa (van Oppen, 2005), Galaxea, Goniastrea (LaJeunesse et. al., 2003), Goniastrea rectiformis (Chen, 2005), Goniopora (LaJeunesse et. al., 2003), Goniopora columba, Goniopora lobata (Chen, 2005), Herpolitha, Hydnophora (LaJeunesse et. al., 2003), Hydnophora excessa (Chen, 2005), Icilogorgia, Lebruna, Leptastrea (LaJeunesse et. al., 2003), Leptoria phrygia (Chen, 2005), Leptoseris incrustans (LaJeunesse, 2004), Linuche, Lobophytum, Merulina (LaJeunesse et. al., 2003), Merulina ampliata (Chen, 2005), Merulina scrabicula (van Oppen, 2005), виды Millepora (LaJeunesse et. al., 2003), Montipora aequituberculata (Chen, 2005), Montipora cactus из Индонезии (van Oppen, 2004), Montipora cactus, Montipora curta из Тайваня (Chen, 2005), Montipora confusa (van Oppen, 2004), Montipora effluorescens, Montipora hispida, Montipora sp., Montipora spongodes, Montipora undata из тайваня (Chen, 2005), Mycedium (LaJeunesse et. al., 2003), Mycedium elephantotus (Chen, 2005), Pachyseris, Paulastrea, Caribbean Palythoa, Гавайские Palythoa (LaJeunesse et. al., 2003), Pavona desucata, Pavona frondifera, Pavona varians, Pavona venosa (Chen, 2005), пузырьковый коралл Plerogyra (LaJeunesse et. al., 2003), Plesiastrea verispora (Chen, 2005), горгонарии Plexaura и Plumigorgia (LaJeunesse et. al., 2003), Тайваньские Pocillopora damicornis (Chen, 2005), Polyphyllia, Porites sp. (LaJeunesse et. al., 2003), мелководные Porites cylindrica, Porites lutea, Porites solida (из Тайваня; Chen, 2006), ББР Psammocora (LaJeunesse et. al., 2003), Pseudosiderastrea tayamai (Chen, 2005), Rhodactis, Rumphella, Sarcophyton, тихоокеанские Scolymia, Siderastrea, Sinularia (LaJeunesse et. al., 2003), Stylocoeniella guentheri (Chen, 2005), Stylophora sp. (LaJeunesse et. al., 2003), Stylophora pistillata (Chen, 2005), тридакны (Tridacna sp.), Turbinaria sp. (LaJeunesse et. al., 2003), Turbinaria mesenteria (Chen, 2005), Тихоокеанские и Карибские виды Zoanthus (LaJeunesse et. al., 2003). 

C15: Ограничивается Индо-Тихоокеанским регионом и считается термально устойчивыми, часто встречается на кораллах Porites. Предпочитает виды Porites, обитающие в Тихом океане, хотя и не ограничивается только этим родом кораллов. Так, C15 также встречается на Aglaophenia, Heteroxenia (западная часть Тихого океана, на глубине 1.0 -15 м, LaJeunesse et al., 2003), Montipora (ББР, Pochon, 2004), Pocillopora damicornis (0.3-8.0м, Кения, Visram and Douglas, 2006), Porites из различных регионов Тихого океана (LaJeunesse et. al., 2003 и Pochon et al., 2004), Porites brighami (на глубине 20м у Гавайских островов, LaJeunesse et al., 2003); Porites compressa (Гавайи, 15-25м, LaJeunesse et al., 2003), Porites cylindrica (ББР, LaJeunesse et al., 2003), Porites evermanni (в настоящее время P. lutea, Гавайи, 5.0-20.0м, LaJeunesse, 2004), Porites lobata (Гавайи, 2-20м, LaJeunesse, 2003), Porites lutea (фиолетовая разновидность, 1.5м, Гавайи, LaJeunesse et al., неопубликованное). Вполне возможно, C15 является разновидностью клады C3 (LaJeunesse, 2005). 

(В качестве примечания, Гавайский экземпляр Porites compressa был перенесен с большой глубины на глубину 1м – он сохранил свои зооксантеллы C15 даже спустя несколько лет после перемещения. Стоит ли говорить о «верности» определенного типа зооксантелл своем кораллу?) 

PAM флуорометрическое исследование показало, что фотонасыщение начинается при 250-400 µmol •m²•sec (~12,500 - 20,000 lux) и фотоингибирование начинается при ~350 - ~750 µmol•m²•sec (~17,500 - 37,500 lux) у гавайских видов Porites lobata и Porites lutea, соответственно (ITS 2 'DNA анализ на P. lutea - LaJeunesse et al., неопубликованное; PAM флюорометрия, Riddle, неопубликованное). 

C73: Встречается только у представителей Montipora digitata, обитающих на мелководье (0.5м, восточная часть Тихого океана, LaJeunesse et. al., 2003). 

Я видел огромное количество рифовых аквариумов по всей стране. Достаточно часто я брал с собой прибор для измерения PAR (Li-Cor 189 с погружаемым датчиком); в результате я собрал следующие данные. 

Оранжевые экземпляры M. digitata оказались устойчивыми к различным условиям освещенности (до 700 µmol•m²•sec в отдельных случаях), но отлично себя чувствуют при более низкой интенсивности освещения, от 144 µmol•m²•sec (мателлогалогенная лампа Iwasaki 400w 6500K), до 150 µmol•m²•sec (PFO LED; см.рисунки 2-5) до 200-223 µmol•m²•sec, и даже до 565 µmol•m²•sec. 

Фиолетовые экземпляры встречаются реже, чем оранжевые. Для успешного содержания таких экземпляров в аквариуме показатели PAR требуются 240-265 µmol•m²•sec (металлогалогенные лампы 175w 6500K и флуоресцентные лампы белого актиничного света VHO). 

Зеленые M. digitata хорошо себя чувствовали при интенсивности света 240 µ•mol•m²•sec (комбинация металлогалогенных ламп 175w 6500K и флуоресцентных ламп белого актиничного света VHO). Еще один зеленый экземпляр хорошо себя чувствовал при интенсивности света 550µmol•m²•sec. 

Синие и розовые экземпляры встречаются редко. Первые растут (и удерживают окраску) при 200 µ•mol•m²•sec (металлогалогенные лампы дневного света 400-watt Venture), а последние отлично себя чувствовали при 360 µmol•m²•sec. 

Примечание: Для тех, у кого есть погружаемый люксметр – будьте внимательны с конвертацией PAR в люксы. Для каждой лампы коэффициент преобразования будет индивидуальным, но как правило, для грубой оценки PAR необходимо разделить lux на 50. 

Течение измерить трудно, поэтому многие аквариумисты полагаются на визуальные ориентиры, расправленность полипов и их движение. При этом, коралл может втягивать полипы, если течение слишком слабое или слишком сильное. Слишком сильное течение может деформировать полипы и даже стать причиной разрыва мягких тканей. С другой стороны, коралл способен почувствовать слишком слабое течение и после продолжительного периода времени коралл понимает, что пищи ему поступает недостаточно, поэтому предпочтет втянуть полипы, чтобы сохранить энергию (Sebens, 1997). (При слишком сильном освещении некоторые кораллы также могут втянуть полипы, чтобы сохранить себя и свои зооксантеллы от избыточного света. Такую ситуацию можно распознать по расправленным полипам в тени и втянутым находящимся на свету полипам). 

К счастью, в настоящее время обеспечить подходящее течение не так уж сложно. Некоторые новые модели стримов способны создать течение достаточной силы, при этом энергии они расходуют немного. (подробнее см. Riddle, 2007). 

Если течение выбрано правильно, полипы будут мягко покачиваться в потоке воды. 

На следующих фотографиях (Рисунки 2-5) представлен процесс роста Montipora digitata на протяжении 12 месяцев. 

Аквариумистам необходимо внимательно следить за концентрацией кальция и уровнем щелочности. Разумеется, кальций необходим для выстраивания скелета, его концентрацию необходимо поддерживать на уровне около 400-450 мг/л. Щелочность также важна (CaCO3) – это неорганический источник углерода для фотосинтеза и роста скелета. Уровень щелочности необходимо поддерживать на уровне 160 мг/л (или ~3.25 meq/l). Добавки бикарбонатов (в виде готовых продуктов для повышения щелочности) помогают ускорить рост кораллов даже с учетом высокой концентрации питательных веществ в аквариуме (Marubini, 1999). 

Вельветовые кораллы могут быть очень яркими: встречаются синие, зеленые, оранжевые, розовые и фиолетовые (их иногда называют «виноградные») колонии, помимо привычных коричневых экземпляров. 

Под воздействием интенсивного освещения оранжевые колонии иногда могут менять окраску на розоватую (скорее всего, это связано с утратой фотопигментов в процессе обесцвечивания зооксантелл). Оранжевая и зеленая окраска связана с присутствием флуоресцирующих пигментов в тканях кораллов. Существует два типа флуоресцирующих пигментов, «ответственных» за оранжевую окраску: первый – флуоресцирующий протеин (Флуоресцирующий Пигмент или FP 575; максимальная эмиссия - 575nm – красновато-оранжевый); второй - фотопигмент (фикоэритрин), который встречается в цианобактериях, состоящих в симбиозе с кораллом (Mazel et al., 2004). Спектр флуоресцирующего вещества у FP-575 и фикоэритрина практически одинаковый. 

Розовая и фиолетовая окраска связаны, скорее всего, с нефлуоресцирующими хромопротеинами. Эти пигменты (предполагаем, что они отличаются друг от друга) отражают красные и синие волны. Статус синего пигмента, как мне кажется, неопределенный. Он может быть флуоресцирующим или нефлуоресцирующим. 

Окраска и доминирование